電融合儀BLS在豬卵母細胞孤雌激活中的應用*

劉曉1，2 張慶橋3 潘登科2** 陳扣扣2，4 張衛紅2，4馮沖2，4 馮書堂2

（1.中國農業科學院蘭州畜牧與獸藥研究所, 蘭州,730050；2.中國農業科學院北京畜牧獸醫研究所,北京,100094；3.河北工程大學，邯鄲，056038；4.甘肅農業大學,蘭州,730070)

摘要:目的 建立并優化BLS細胞融合儀在豬孤雌胚體外生產中的使用條件，同時為克隆胚的生產提供數據參考。方法 以體外成熟的豬卵母細胞為研究對象，研究了不同的電場強度、脈沖時程和脈沖次數對豬卵母細胞電激活效果及其對孤雌胚發育率的影響。結論 電激參數(1.2KV/cm 、100μs、2次脈沖)能夠得到較高的卵裂率和囊胚率(70%、30%左右)；BLS細胞融合儀是一種經濟高效的胚胎激活儀。

關鍵詞: 豬；孤雌激活；BLS融合儀

中圖分類號：S828.3           文獻標識碼：A             文章編號：

豬的解剖及生理結構與人類很相似，是研究人類**的理想實驗動物，在生物醫學領域中得到廣泛應用[1-3]。小型豬以其作為異種器官移植供體的獨特優越性，日益成為國內外研究的新熱點[4]。人源化基因豬的研究和應用對豬的胚胎生物技術中起到了積極的推動作用，而卵母細胞的激活又是這些研究的重要環節之一。

哺乳動物卵母細胞的人工激活有物理和化學的方法[5]。有報道，化學激活刺激豬卵母細胞激活率低，電激活的卵裂率明顯高于化學激活。迄今為止出生的核移植豬主要采用電激活方法獲得的。目前常用的電融合儀主要是產于美國、日本和澳大利亞，價格昂貴。匈牙利生產的一種簡易便攜電融合儀BLS，專為哺乳動物胚胎電融合而設計，此儀器主要應用于生產小鼠四倍體胚胎，在豬的卵母細胞激活和克隆胚的融合激活中很少應用。本實驗旨在探索BLS細胞融合儀的不同電激活參數條件對豬體外成熟卵母細胞人工激活效果的影響，優化BLS細胞融合儀在豬孤雌胚體外生產中的*佳條件，并為豬體細胞重構胚胎的融合激活及四倍體制備提供一種高效設備。

1 材料和方法

1.1試驗材料

所有化學試劑均購自Sigma公司；卵母細胞體外成熟（IVM）以及胚胎培養耗材分別為NUNC，Greiner (German)公司產品。

1.2 主要溶液

抽卵液PVA-DPBS為無鈣的PBS緩沖并添加了0.1%(質量體積比) 聚乙烯醇(PVA)配成；卵母細胞體外成熟（IVM）液為無BSA 的NCSU-23(North Carolina State University23)添加10%(體積比)豬卵泡液(PFF)，10 ng/mL表皮生長因子(EGF)，10 IU/mL人絨毛膜促性腺**(hCG) 和10IU/mL 孕馬血清促性腺**(PMSG)；融合/激活液由0.28 mol/L 甘露醇，0.1 mmol/L 氯化鈣，0.1 mmol/L 氯化鎂，0.5 mmol/L HEPES 以及0.01%PVA組成；胚胎培養基為PZM + 0.3% BSA；0.1%透明質酸酶。

1.3 試驗方法

1.3.1 豬卵母細胞體外成熟（IVM） 從屠宰場取母豬卵巢，放入30-35℃含青霉素和硫酸鏈霉素的生理鹽水中，5 h 內運回實驗室。用配有18G針頭的20 mL注射器抽吸卵巢上直徑3-6 mm的卵泡，經

PVA-DPBS洗滌3遍后挑選卵丘包裹3層以上，致密且胞質均勻的卵丘細胞-卵母細胞復合體(COCs)，

再用IVM培養液洗滌3遍。將洗滌好的COCs轉入IVM培養液中培養。COCs在39℃，5％CO2，100％濕度的CO2培養箱中成熟 20- 22h后，轉移到未添加**的IVM液中繼續培養20-22h，用0.1% 透明質酸酶脫去包裹在其周圍的卵丘細胞，卵周隙明顯、卵細胞膜完整且排出**極體的卵母細胞視為成熟卵母細胞。

1.3.2 卵母細胞孤雌激活  取上述脫去卵丘的MⅡ卵母細胞，用激活液洗滌3遍。再將卵母細胞轉移到已經鋪滿激活液，電極寬度為0.5mm的融合槽中，用CF-150B（BLS）細胞融合儀以不同電場強度（1.6KV/cm、1.2KV/cm、0.8KV/cm、0.6KV/cm）、不同脈沖次數（1次、2次、3次）、不同脈沖時程（50μs、100μs、150μs）進行誘導激活。洗滌后將卵母細胞轉移到PZM3 + 7.5μg/mL CB（細胞松弛素B）的液滴內作用4h, 然后轉移到PZM3中, 48h和168h觀察胚胎的卵裂和囊胚發育情況。

注：實驗中除被檢驗的參數外，其他條件均保持不變。

1.4 數據處理

每個處理重復4次，數據結果用SAS 的ANOVA 過程進行分析，Duncan’s 檢驗方法判定處理間的差異顯著性，當P < 0.05時認為差異顯著。

2 結 果

2.1 電場強度對豬卵母細胞孤雌激活的影響

脈沖時程100μs、脈沖次數2次，以不同電場強度（0.6KV/cm、0.8KV/cm、1.2KV/cm、1.6KV/cm）誘導卵母細胞激活。隨著場強的增加，卵裂率和囊胚率升高，但在1.6KV/cm時，胚胎死亡率急劇上升，結果見表1。電場強度為1.2KV/cm時，卵裂率和囊胚率分別達到(72.5%、34.5%)，顯著高于其它組（P<0.05）。

表1 不同電場強度對豬卵母細胞孤雌激活的影響

同一欄內上標不同字母表示差異顯著(P<0.05)，下同。

2.2 脈沖次數對豬卵母細胞孤雌激活的影響

脈沖時程100μs、電場強度為1.2KV/cm時，脈沖次數并未對卵裂率、囊胚率造成顯著影響（P>0.05），結果見表2。電場強度1.2KV/cm、100μs、2次脈沖處理時卵裂率和囊胚率要高于1次及3次脈沖處理, 分別達到了(68.5%、26.7%)。

表2 不同脈沖次數對豬卵母細胞孤雌激活的影響

2.3 脈沖時程對豬卵母細胞孤雌激活的影響

電場強度為1.2KV/cm、脈沖次數2次，不同脈沖時程誘導卵母細胞激活，結果見表3。脈寬100μs時, 孤雌胚的卵裂率及囊胚率顯著高于其它組（P<0.05）, 達到了(77.5%、33%)，但脈沖時程的進一步增加并不能使卵母細胞激活后的發育率升高。

表3 不同脈沖時程對豬卵母細胞孤雌激活的影響

3 討 論

電刺激是一種應用*為廣泛的卵母細胞激活方法，高壓直流電脈沖短時間作用于卵母細胞，可以使卵細胞膜上生成暫時性孔洞，細胞內外的離子和大分子借此進行交換，引起細胞內游離鈣升高，從而激活卵母細胞。電脈沖引起的微孔大小受脈沖強度、時間和脈沖次數的影響。多數報道是以激活率和囊胚發育率為標準，本試驗獲得了BLS細胞融合儀激活豬卵母細胞的適宜條件：1.2KV/cm、脈寬100μs的2次直流刺激，并取得了較高的卵裂率（70%左右）和囊胚發育率（30%左右），略高于潘登科等[6]用ECM2001(美國)電融合儀激活卵母細胞的孤雌胚囊胚發育率20-30%，也高于劉國世等[7] 使用日本電激儀(Embryo cell fusion system，Fujira Industry Co．Ltd，Japan)激活卵母細胞的的孤雌胚囊胚發育率18.9%，高于曹勝蘭等[8]使用國產寧波新芝電激儀激活卵母細胞的囊胚率（21.54%）。

本研究建立并優化了BLS細胞融合儀在豬卵母細胞孤雌激活的條件，為體細胞核移植重構胚的融合激活提供了數據參考。*近丹麥科學家等[9]使用該儀器已經獲得了徒手體細胞克隆豬，這些都說明了BLS細胞融合儀作為一種便攜、微型、價廉的電激儀，在豬的胚胎工程中具有較好  的性能，將在我國的豬胚胎生物技術領域發揮重要作用。

參考文獻

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The Application of BLS Cell Fusion Instrument on Porcine Parthenogenetic Activation

LIU Xiao1,2, ZHANG Qing-qiao3, Pan Deng-ke2* ,CHEN Kou-kou2,4, ZHANG Wei-hong2,4, FENG Chong2,4, FENG Shu-tang2

(1.Lanzhou Institute of Animal Science and Veterinary Pharmaceutics, Chinese Academy of Agricultural Sciences(CAAS) Lanzhou,730050;2.Institute of Animal Science, CAAS, BeiJing, 100094;3.Hebei University of Engineering,Handan,056038;4.Gansu Agricultural University, Lanzhou,730070)

Abstract: Objective To establish and optimize the electric parameters of BLS cell fusion on porcine parthenogenetic embryo, being for the cloned ones. Methods MⅡ oocytes matured in vitro were activated by electrically stimulation with different pulses and different strength and different field duration to induce parthenogenetic 
Activation and further development. Conclusions Parameter (1.2KV/cm 、100μs、2 pulses) supported Higher percentages of cleavage and blastocyst (70% and 30% or so) ; BLS fusion instrument is efficient and stable for production of
 porcine embryos in vitro.

Keywords: Porcine; Parthenogenetic activation; BLS fusion instrument